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Ingex TGIRT™-III Enzyme 說明書

更新時間:2018-05-30點擊次數:4479

 

TGIRT™-III Enzyme

 

規格:

 10 Reactions (TGIRT10)

50 Reactions (TGIRT50)

5 x 50 µl (TGIRT5x50)

10 x 50 µl (TGIRT10x50)

 

單位定義:

 

TGIRT的一個單元® -III逆轉錄酶(RT)活性是酶的使用聚在60℃下聚合1納摩爾的dNTP的在1分鐘(RA)所需要的量/寡(dT)42作為底物。

酶濃度:

 

200單位/μl

酶儲存緩沖液:

 

20mM Tris-HCl(pH 7.5),500mM KCl,1mM EDTA,1mM DTT,50%甘油

酶屬性和新穎活動:

 

比逆轉錄逆轉錄酶更高的熱穩定性,持續合成能力和保真度,允許從高度結構化或重度修飾的RNA (例如tRNA)和包含富含GC的重復擴增的RNA合成全長,端對端cDNA 。1-9,12,15,18

新型端對端模板轉換活動,可在反轉錄過程中連接RNA-seq或PCR適配器,并且無需單獨的RNA 3'-適配器連接步驟。1這種模板轉換活性極大地促進了鏈特異性RNA-seq文庫的構建,而且比使用隨機六聚體引物或使用RNA連接酶進行銜接子連接的方法具有更小的偏差。1,7,8

從退火引物合成cDNA。將退火的引物應具有推測的T 米 > 60的直徑: C.酶與反應底物混合,在室溫下,通過加入dNTP的反應開始30分鐘的預溫育,建議。新應用的zui宜條件應該通過測試25-450mM NaCl的一系列鹽濃度來確定。

建議用于酶的用途:

 

1.全面的鏈特異性轉錄組分析。8

 

2.全細胞,外泌體,血漿和其他無細胞RNA的RNA-seq。7,8,15

 

3.分析miRNA,tRNA和其他小的非編碼RNA。1-9,12,15

 

4. RIP-seq,HITS-CLIP,irCLIP和CRAC用于表征RNA-蛋白質相互作用和核糖體分析。1,10,11

 

5.通過高通量測序鑒定RNA堿基修飾。4,5,13,??14

 

6.使用諸如SHAPE和DMS修飾的方法進行全基因組或靶向RNA結構作圖。1,16

 

7.富含GC重復擴增的逆轉錄和定量。18

 

8.長cDNA的合成。1

 

9.RT-qPCR。1

 

10.單鏈DNA-seq。17

 

11.分析FFPE腫瘤樣本(咨詢InGex)。

 

酶的優點:

 

1.全面的鏈特異性轉錄組分析。

 

核糖核碎片,通用人類參考RNA樣品的TGIRT®-seq概括了人類轉錄物和穗突起的相對豐度,與非鏈特異性TruSeq v2相比,并且優于鏈特異性Tru-Seq v3。TGIRT®-seq比TruSeq v3具有更高的鏈特異性,并消除了TruSeq固有的隨機六聚體引發的取樣偏差。TGIRT®-seq顯示出更加統一的5'至3'基因覆蓋范圍,并且比TruSeq識別更多的剪接點。TGIRT®-seq能夠在與結構化小型ncRNA相同的RNA-seq中同時分析mRNA和lncRNA,包括tRNA,TruSeq數據集基本上不存在tRNA。8

 

 

 

2.全細胞,外泌體,血漿和其他細胞外RNA的RNA-seq。

 

快速的處理時間(通過PCR步驟對RNA-seq文庫構建<5小時); 需要少量的RNA(低ng范圍); 包括mRNA和lncRNA以及小ncRNA的全面轉錄譜,包括tRNA,pre-miRNA和其他結構化小型ncRNA的全長讀段; 比常規方法更少的偏差和更大的鏈特異性。7,8,15

 

3.通過TGIRT®模板轉換的RNA-seq文庫構建,如RIP-seq,HITS-CLIP,irCLIP,CRAC,??核糖體譜分析。

 

快速的處理時間(通過PCR步驟對RNA-seq文庫構建<5小時); 需要少量的RNA(低ng范圍); 不需要RNA連接酶,通過減少步驟中的步驟來減少偏倚并提率。1,10,11

 

4.比逆轉錄病毒RT更高的熱穩定性,持續合成能力和鏈置換活性。

 

使用錨定寡核苷酸(dT)引物,可以構建RNA聚合腺苷酸化的RNA文庫,與沒有ribodepletion步驟的逆轉錄病毒RT相比,具有更均勻的5'至3'覆蓋范圍。1

通過基于毛細管電泳的方法(如SHAPE或DMS結構圖)進行RNA結構作圖,其顯著的讀數長度和更少的提前停止時間比逆轉錄病毒RTs更短。1,16

可以分析含有富含GC的重復擴增的RNA模板。18

能夠合成來自tRNA和其他小型結構化/修飾的ncRNA的全長,端對端cDNA,這些逆轉錄病毒RT難以治療。4-9,12-15     

5.人血漿和大腸桿菌  基因組DNA的ssDNA-seq 。

 

通過直接在DNA鏈的3'末端啟動DNA合成,同時連接DNA-seq接頭而不進行末端修復,拖尾或連接,以更簡單的工作流程捕獲的DNA末端。能夠分析核小體定位,轉錄因子結合位點,DNA甲基化位點和起源組織。17

 

參考文獻:

 

  1. Mohr, S., Ghanem, E., Smith, W., Sheeter, D., Qin, Y., King, O., Polioudakis, D., Iyer, V.R., Hunicke-Smith, S. Swamy, S., Kuersten, S., and Lambowitz, A.M. Thermostable group II intron reverse transcriptase fusion proteins and their use in cDNA synthesis and next-generation RNA sequencing. RNA 19, 958-970, 2013.
  2. Collins, K. and Nilsen, T. Enzyme engineering through evolution: thermostable recombinant group II intron reverse transcriptases provide new tools for RNA research and biotechnology. RNA 19, 1017-1018, 2013.
  3. Enyeart, P.J., Mohr, G., Ellington, A.D., and Lambowitz A.M. Biotechnological applications of group II introns and their reverse transcriptases: gene targeting, RNA-seq, and non-coding RNA analysis. DNA 5:2, 2014.
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  8. Nottingham, R.M., Wu, D.C., Qin, Y., Yao, J., Hunicke-Smith, S., and Lambowitz, A.M. RNA-seq of human reference RNA samples using a thermostable group II intron reverse transcriptase. RNA 22, 597-613, 2016.
  9. Burke, J.M., Kincaid, R.P., Nottingham, R.M., Lambowitz, A.M., and Sullivan, C.S. DUSP11 activity on tri-phosphorylated transcripts promotes Argonaute association with noncanonical viral microRNAs and regulates steady state levels of cellular non-coding RNAs. Genes & Dev. 30, 2071-2092, 2016.
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  3. Carrell, S.T., Tang, Z., Mohr, S., Lambowitz, A.M, and Thorton, C.A. Detection of expanded RNA repeats using thermostable group II intron reverse transcriptase. Nucleic Acids Res. 46, e1, 2018.

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